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HJ 1216-2021水质 浮游植物的测定0.1ml计数框-显微镜计数

作者:lfb 时间:2022-11-09 来源:互联网

HJ 1216-2021 水质 浮游植物的测定 0.1 ml 计数框-显微镜计数法

1 适用范围

本标准规定了测定水中浮游植物的 0.1 ml 计数框-显微镜计数法。本标准适用于地表水中浮游植物的密度测定。

样品浓缩 50 倍时,对角线方式计数方法检出限为 9.2×103cells/L;行格方式计数方法检出限为3.0×103 cells/L;全片方式计数方法检出限为 9.2×102 cells/L;随机视野方式计数的方法检出限与观察的视野数、显微镜视野面积有关,按附录A 计算。

2 规范性引用文件

本标准引用了下列文件或其中的条款。凡是注明日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本标准。凡是未注日期的引用文件,其新版本(包括所有的修改单)适用于本标准。

GB/T 14581 水质 湖泊和水库采样技术指导

HJ/T 91 地表水和污水监测技术规范

HJ 494 水质 采样技术指导

3 术语和定义

下列术语和定义适用于本标准。

3.1

浮游植物 phytoplankton

在水中营浮游生活的微小藻类植物,通常浮游植物就是浮游藻类,包括原核的蓝藻和其它各类真核藻类。

3.2

显微镜计数视野 microscope counting field

显微镜视野中限定一定面积的区域,用于定量计数浮游植物。

3.3

检出限 detection limit

单次计数过程中,发现的概率不低于 99%时低的浮游植物密度。

4 方法原理

在显微镜下,利用 0.1 ml 计数框对样品中的浮游植物进行人工分类和计数,计算单位体积样品中各种类浮游植物的细胞数量。

5 试剂和材料

除非另有说明,分析时均使用符合国家标准的分析纯试剂,实验用水为新制备的去离子水或蒸馏水。

5.1 碘(I2)。

5.2 碘化钾(KI)。

5.3 甲醛溶液:w=37%~40%。

5.4 丙三醇(HOCH2CHOHCH2OH)。

5.5 鲁哥氏碘液:

称取 60 g 碘化钾(5.2),溶于 100 ml 水中,再加入 40 g 碘(5.1),充分搅拌使其完全溶解,加水定容至 1000 ml,转移至棕色磨口玻璃瓶,室温避光保存。

6 仪器和设备

6.1 25 号浮游生物网:网孔直径为 0.064 mm,网呈圆锥形,网口套在铜环上,网底端有出水开关活塞。

6.2 定性采样瓶:30 ml~100 ml 广口聚乙烯瓶。

6.3 采水器:不锈钢或有机玻璃材质,圆柱形。容量和深度规格要满足采样要求。

6.4 定量采样瓶:1 L~2 L 广口聚乙烯瓶。

6.5 正置或倒置生物显微镜:物镜 4×、10×、20×、40×,目镜 10×或 15×。

6.6 浓缩装置:1 L~2 L 筒形分液漏斗或量筒。

6.7 样品瓶:50 ml 具塞棕色玻璃广口瓶。

6.8 超声波发生装置:工作频率 40 kHz,水浴方式。

6.9 微量移液器:100 μl。

6.10 0.1 ml 浮游植物计数框:面积 20 mm×20 mm,框内划分横竖各 10 行格,共 100 个小方格。

6.11 盖玻片:面积 22 mm×22 mm,厚度小于 0.2 mm。

6.12 载物台测微计:又称镜台测微计,1 mm/100 DIV,分划值为 0.01 mm。

注:DIV 指等分格,1 mm/100 DIV 即 1 mm 等分成 100 格。

6.13 目镜分划板:又称目镜测微尺,5 mm/50 DIV,分划值为 0.1 mm。

6.14 计数器。

6.15 一般实验室常用仪器和设备。

7 样品

7.1 样品的采集

7.1.1 定性样品

点位布设及采样频次按照GB/T 14581、HJ/T 91 和HJ 494 的相关规定执行。也可根据调查研究目的确定。

使用 25 号浮游生物网(6.1)采集定性样品。关闭浮游生物网底端出水活塞开关,在水面表层至 0.5 m 深处以 20 cm/s~30 cm/s 的速度做“∞”形往复,缓慢拖动约 1 min~3 min,待网中明显有浮游植物进入,将浮游生物网(6.1)提出水面,网内水自然通过网孔滤出,待底部还剩少许水样(5 ml~10 ml)时,将底端出口移入定性采样瓶(6.2)中,打开底端活塞开关收集定性样品。采集分层样品时,用 25 号浮游生物网(6.1)过滤特定水层样品,其他步骤同采集表层样品。定性样品采集完成后及时将浮游生物网清洗干净。样品采集后冷藏避光运输。

如有定性样品采集的技术规范,按技术规范有关要求执行。

7.1.2 定量样品

按照GB/T 14581、HJ/T 91 和HJ 494 的相关规定进行定量样品的采集。

用采水器(6.3)采集样品至定量采样瓶(6.4)中,一般采集不少于 500 ml 样品。若水体透明度较高,浮游植物数量较少时,应酌情增加采样体积。定量样品采集后,样品瓶不应装满,以便摇匀。

注 1:有些浮游植物(如蓝藻)常浮于水面或成片、条带分布,可在此水华密集区域采样作为峰值参考。注 2:定量样品采集应在定性样品采集之前。应保持固定时间段采样,以便结果之间可相互比较。

7.2 样品的保存

7.2.1 定性样品

定性样品采集后立即加入鲁哥氏碘液(5.5),用量为水样体积的 1.0%~1.5%。镜检活体样品不加鲁哥氏碘液固定。定性样品在室温避光条件下可保存 3 周;1 ℃~5 ℃冷藏避光条件下可保存 12 个月。活体样品在 4 ℃~10 ℃避光条件下可保存 36 h。

7.2.2 定量样品

定量样品采集后立即加入鲁哥氏碘液(5.5)固定,用量为水样体积的 1.0%~1.5%。也可将鲁哥氏碘液(5.5)提前加入定量采样瓶(6.4)中带至现场使用。定量样品在室温避光条件下可保存 3 周;1 ℃~ 5 ℃冷藏避光条件下可保存 12 个月。

样品在保存过程中,应每周检查鲁哥氏碘液(5.5)的氧化程度,若样品颜色变浅,应向样品中补加适量的鲁哥氏碘液(5.5),直到样品的颜色恢复为黄褐色。

注:若样品需长期保存,应加入甲醛溶液(5.3),用量为水样体积的 4%。

8 分析步骤

8.1 混匀样品

每次取样前,采用上下颠倒至少 30 次的方式充分混匀所采样品,混匀动作要轻。

8.2 定性样品的分析

在显微镜(6.5)下观察定性样品(7.1.1),鉴定浮游植物的种类。优势种类鉴定到种,其他种类至少鉴定到属。部分物种鉴定参考资料见参考文献。

注:种类鉴定除用定性样品观察外,还可吸取已完成计数的定量样品进行观察。

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