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HJ 1192-2021水质9种烷基酚类化合物和双酚A的测定 固相萃取

作者:lfb 时间:2022-11-09 来源:互联网

HJ 1192-2021 水质 9 种烷基酚类化合物和双酚A 的测定 固相萃取 高效液相色谱法

警告:实验中所使用的有机溶剂、标准物质和标准溶液均有一定的毒性,试剂配制和样品前处理过程应在通风橱中进行,操作时应按规定要求佩戴防护器具,避免吸入呼吸道、接触皮肤和衣物。

1 适用范围

本标准规定了测定水中烷基酚类化合物和双酚 A 的高效液相色谱法。

本标准适用于地表水、地下水、生活污水和工业废水中 4-叔丁基苯酚、4-丁基苯酚、4-戊基苯酚、4-己基苯酚、4-庚基苯酚、4-辛基苯酚、4-支链壬基酚、4-叔辛基苯酚和 4-壬基酚等 9 种烷基酚类化合物和双酚A 的测定。

当取样体积为 200 ml,试样的定容体积为 1.0 ml,进样体积为 30 µl 时,方法检出限为 0.04 μg/L~0.06 µg/L,测定下限为 0.16 μg/L~0.24 µg/L。详见附录 A。

2 规范性引用文件

本标准引用了下列文件或其中的条款。凡是注明日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本标准。凡是未注日期的引用文件,其新版本(包括所有的修改单)适用于本标准。

HJ/T 91 地表水和污水监测技术规范

HJ 91.1 污水监测技术规范

HJ 164 地下水环境监测技术规范

3 术语和定义

下列术语和定义适用于本标准。

3.1

4-支链壬基酚 4-nonyl-branched phenol

商品化的 4-壬基酚的支链异构体混合物,CAS No.为 84852-15-3。

4 方法原理

水中的烷基酚类化合物和双酚A 在酸性条件下,经固相萃取富集、净化,用甲醇和二氯甲烷洗脱, 浓缩后使用具有荧光检测器的高效液相色谱仪测定,根据保留时间定性,外标法定量。

5 试剂和材料

除非另有说明,分析时均使用符合国家标准的分析纯试剂,实验用水为新制备的不含目标化合物的蒸馏水或纯水。

5.1 硫代硫酸钠(Na2S2O3•5H2O):优级纯。

5.2 乙腈(CH3CN):高效液相色谱纯。

5.3 二氯甲烷(CH2Cl2):农残级。

5.4 正己烷(C6H14):高效液相色谱纯。

5.5 甲醇(CH3OH):高效液相色谱纯。

5.6 丙酮(CH3COCH3):农残级。

5.7 盐酸:ρ=1.19 g/ml。

5.8 盐酸溶液:φ=50%。

量取 100 ml 盐酸(5.7),缓慢加入到 100 ml 实验用水中,混匀。

5.9 甲醇溶液:φ=30%。

分别量取 30 ml 甲醇(5.5)和 70 ml 实验用水,混匀。

5.10 乙腈溶液:φ=50%。

分别量取 50 ml 乙腈(5.2)和 50 ml 实验用水,混匀。

5.11 烷基酚类化合物和双酚A 标准贮备液:ρ=1000 μg/ml。

可购买市售有证标准溶液,组分包括 4-叔丁基苯酚、4-丁基苯酚、4-戊基苯酚、4-己基苯酚、4-庚基苯酚、4-辛基苯酚、4-支链壬基酚、4-叔辛基苯酚、4-壬基酚和双酚 A,溶剂为乙腈(5.2),按标准溶液证书要求保存。也可用市售有证标准物质制备,制备的标准贮备液于 4 ℃以下冷藏、密封、避光保存,保存期为 1 a。

5.12烷基酚类化合物和双酚A 标准中间液:ρ=100 μg/ml。

准确移取 1.00 ml 烷基酚类化合物和双酚A 标准贮备液(5.11)于 10 ml 容量瓶中,用乙腈(5.2) 定容至刻度。标准中间液于 4 ℃以下冷藏、密封、避光保存,保存期为 6 个月。

5.13 烷基酚类化合物和双酚A 标准使用液:ρ=10.0μg/ml。

准确移取 1.00 ml 烷基酚类化合物和双酚A 标准中间液(5.12)于 10 ml 容量瓶中,用乙腈(5.2) 定容至刻度。标准使用液于 4 ℃以下冷藏、密封、避光保存,保存期为 6 个月。

5.14 石英滤膜:孔径为 0.45 µm,使用前在 400 ℃的马弗炉中烘烤 2 h。

5.15 滤膜:孔径为 0.45 μm,疏水性聚四氟乙烯或其他等效材质。

5.16 氮气:纯度≥99.99%。

6 仪器和设备

6.1 采样瓶:250 ml,棕色细口玻璃瓶,配玻璃塞。使用前可用实验用水、丙酮(5.6)依次清洗,避免使用表面活性剂类洗涤剂。

6.2 高效液相色谱仪:配备荧光检测器。

6.3 色谱柱:填料粒径 5 µm,柱长 25 cm,内径 4.6 mm 的 C18 反相色谱柱,或其他等效色谱柱。

6.4 浓缩装置:氮吹仪或其他性能相当的浓缩装置。

6.5 固相萃取柱:250 mg/6 ml,聚丙烯或者玻璃材质,填料为苯乙烯和二乙烯苯共聚物,或其他等效固相萃取柱。

6.6 固相萃取装置:手动或自动,流速可调节。

6.7 微量注射器:10 µl 、50 µl 、100 µl 、250 µl、1 ml。

6.8 量筒:50 ml、100 ml、200 ml、500 ml。

6.9 一般实验室常用仪器和设备。

7 样品

7.1 样品采集与保存

按照HJ/T 91、HJ 91.1、HJ 164 的相关规定进行样品采集和保存。用采样瓶(6.1)采集样品,如样品中含有余氯,需向样品中加入硫代硫酸钠(5.1),使样品中硫代硫酸钠的浓度为 80 mg/L,加盐酸溶液(5.8)调节样品 pH 值为 1~2。样品应充满采样瓶(6.1)并加盖密封,于 4 ℃以下冷藏、避光保存, 7 d 内完成分析。

每批次样品应至少采集1 个全程序空白样品,将1 份实验用水放入样品瓶中密封,并带到采样现场,与采样样品瓶同时开盖和密封,之后随样品运回实验室。

7.2 试样的制备

7.2.1 过滤

样品在进行固相萃取之前需经石英滤膜(5.14)过滤,过滤后的样品需全部转移至量筒(6.8)中, 准确记录样品体积,并全部用于固相萃取。过滤后的石英滤膜(5.14)放入 10 ml 玻璃管中,加入 5 ml乙腈(5.2)超声提取 10 min,将超声提取液经石英滤膜过滤后收集至浓缩瓶中。

注:若样品中不存在肉眼可见的悬浮物,无需过滤,准确量取 200 ml 样品进行固相萃取即可。

7.2.2 固相萃取

依次用 10 ml 正己烷(5.4)、10 ml 二氯甲烷(5.3)、10 ml 甲醇(5.5)和 10 ml 实验用水活化固相萃取柱(6.5),在活化过程中,应确保固相萃取柱中填料表面不露出液面。将过滤后的样品(7.2.1),以 3 ml/min~5 ml/min 的流速通过固相萃取柱。上样结束后,用 10 ml 甲醇溶液(5.9)淋洗固相萃取柱,去除固相萃取柱上的杂质,然后用氮气(5.16)吹干固相萃取柱,再以 2 ml/min~4 ml/min 的流速,分别用 2 ml 甲醇(5.5)和 5 ml 二氯甲烷(5.3)洗脱,收集洗脱液至浓缩瓶中。

注 1:当样品中任一目标化合物测定浓度大于 20.0 µg/L 时,应考虑固相萃取柱穿透的风险。

注 2:其他固相萃取的方式,经验证满足要求,也可适用于本方法。

7.2.3 浓缩

将提取液(7.2.1)和洗脱液(7.2.2)合并后,用浓缩装置(6.4)浓缩到 1 ml 以下,加入 3 ml 乙腈(5.2),再浓缩至约 1 ml,将溶剂完全置换为乙腈后,用乙腈(5.2)定容至 1.0 ml,过滤膜(5.15)后待测。

注:置换溶剂时,不要将溶剂吹干,重复置换操作 2~4 次。

7.3 空白试样的制备

7.3.1 实验室空白

用实验用水代替样品,按照与试样的制备(7.2)相同的操作步骤,制备实验室空白试样。

7.3.2 全程序空白

全程序空白样品(7.1),按照与试样的制备(7.2)相同的操作步骤,制备全程序空白试样。

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